70. Koje su mjere predostrožnosti za određivanje preostalog hlora?
Klor je vrlo nestabilan u vodenom rješenju, posebno u niskim koncentracijama, a sadržaj će se brzo smanjiti. Stopa smanjenja hlora bit će ubrzana kada je izložena suncu i drugoj jakoj svjetlosti ili uznemirenoj. Stoga se uzorak ne može pohraniti nakon uzorkovanja, a odlučnost hlora mora biti odmah pokrenuti, izbjegavajući izloženost svjetlosti i miješanja uzorka vode.
Sve operacije tijekom postupka odlučnosti moraju izbjegavati izravnu izloženost suncu i najbolje je da se izvrši na najnižoj mogućim temperaturi i mekoj svjetlu. Pored toga, sve kolorimetrijske metode zahtijevaju boju i zamućene praznine kako bi nadoknadili boju i kromatičnost sirove vode, posebno kada su zamućenost i kromatičnost visoki, mora se odrediti prazna vrijednost.
Kada se koristi O-Tolidin Visual Colorimetric metoda za određivanje preostalog hlora, ako se uzorak vode ravnomjerno pomiješa sa standardnim O-tolidin otopinom, a zatim se u kolorimetrijskoj metodi odmah izvodi, izmjereni rezultat je besplatni preostali hlor. Ako je uzorak vode postavljen na tamno mjesto za 10 minuta za proizvodnju najviših kromatičnosti prije nego što se izvrši kolorimetrijska metoda, rezultat je ukupnog preostalog hlora. Ukupni preostali hlor minus Besplatan zaostali hlor je kombinirani zaostali hlor.
Kada koristite vizuelnu kolorimetrijsku metodu o-tolidin za određivanje, ako je preostali hlor velik, izrađuje se narandžasto-žuta boja; Ako je uzorak vode alkalnost previsoka i preostali hlor je mali, svijetlo zeleno ili svijetlo plava boja bit će proizvedena. U ovom trenutku može se dodati 1 ml O-tolidin standardno rješenje za proizvodnju normalne svijetlo žute boje.
71. Koje su razlike između biološke faze biofilma metode i aktiviranog mulja?
Karakteristike biološke faze sistema za liječenje biofilma razlikuju se od onih aktivnog procesa mulja, uglavnom u pogledu mikrobnih vrsta i distribucije.
Generalno gledano, zbog postepene promjene kvaliteta vode i poboljšanja okolišnih uvjeta za rast mikroorgana, tipovi i količine mikroorganizama u sustavu biofilma, a prehrambeni lanac je dugačak i izrazit je i određeni udio anaerobne bakterije i fakultativne bakterije. Alge se mogu pojaviti u područjima koja su izložena sunčevoj svjetlosti, a insekti poput filtarnih muha mogu se pojaviti i. Karakteristike distribucije su da duž debljine biofilma (sa površine u unutrašnjost) ili smjera utjecaja (različito vrijeme kontakta s utjecajem), vrste i količine mikroorganizama pokazuju velike razlike. U prvoj fazi višestepenog tretmana ili gornjeg dijela sloja za punjenje ulaznog protoka, biofilm često dominiraju flokulentne bakterije, a debljina filma također je relativno velika (2-3 mm); Povećanjem broja faza ili donjim dijelom sloja za punjenje protoka, jer su kvalitetni kvalitet vode djelomično tretirani, u biofilmu će se postepeno tretirati, više u biofillu; Vrste mikroorganizama povećavaju se, ali debljina biofilma se neprestano smanjuje (1-2 mm). Mikroorganizmi na površini biofilma su svi aerobni, a kako se debljina povećava, mikroorganizmi postepeno postaju fakultativni ili čak anaerobni.
Biofilm je fiksiran na filtarskom materijalu ili punilo, a biološki vremenski vremenski rok za zadržavanje SRT (dob mulja) je dugačak, tako da može uzgajati mikroorganizme sa dugom vremenom generacije i vrlo male širenjem, poput nitrifikacionih bakterija. Na BIOFILM-u se takođe može pojaviti veliki broj filamentnih bakterija, ali neće se pojaviti bušenje mulja. U usporedbi s aktivnim načinom mulja, udio životinjske prehrane u organizmima na biofilmu je veći, brzina preživljavanja mikro životinja je također veća, a može nastaniti organizarstvo na nivou visokoh hranjivih tvari. Oligochaetes i insekti naseljavaju iznad grabežljivih cilijata, rotifera i nematoda. Stoga je prehrambeni lanac na biofilmu duži od prehrambenog lanca u aktiviranom mulju, zbog čega je količina mulja proizvedenog biofilm metodom manja od načina aktiviranog načina mulja.
Karakteristični mikroorganizmi na svakom nivou ili svaki sloj punila bit će različiti zbog različitog kvaliteta otpadnih voda, odnosno promjene u kvaliteti vode uzrokovat će promjene u vrstama mikroorganizama u biofilmu. Kada se utjecajna koncentracija poveća, može se primijetiti da se karakteristični mikroorganizmi prvobitnog nivoa pomiču prema dole, odnosno mikroorganizmi izvorno na prednjem nivou ili gornji sloj punila mogu se pojaviti na leđima ili donjem sloju punila. Stoga se slične promjene mogu primijetiti kroz promatranje biološkog faza do zaključak promjena u koncentraciji otpadnih voda ili opterećenja mulja.
72. Kakvo je značenje ukupnog pokazatelja bakterijskog broja u vodi?
Ukupna bakterijska brojanica odnosi se na broj kolonija koji se uzgajaju u 1ml uzorka vode u mediju hranjivim sastonom nakon kulture na 37oC-u za 24h. Jedinica mjerenja općenito je ukupan broj bakterija sadržanih u svakom ml vode. Ukupan broj bakterija u vodi često se odnosi na stupanj organskog zagađenja u vodenom tijelu, a jedan je od važnih pokazatelja za ocjenu stupnja zagađenja vode i mogući štetu ljudskom tijelu.
Način anakse ukupnog broja bakterija koristi standardnu metodu ploče za prebrojavanje bakterija u uzorku vode, što je metoda za određivanje gustoće aerobnih i fakultativnih anaerobnih heterotrofičnih bakterija u vodi. Međutim, budući da nema hranjivih tvari ili bilo kojeg okolišnog stanja mogu ispuniti fiziološke zahtjeve svih bakterija u uzorku vode, a bakterije u vodi mogu postojati u obliku pojedinih pojedinaca, parova, lanaca, preživljavača, zapravo niži od broja bakterija koji zapravo preživljavaju u testiranom uzorku vode.
73. Koje su mjere predostrožnosti za određivanje ukupnog broja bakterija?
Upotrijebite metodu aseptičnog rada za apsorbiranje uzorka vode ili 2 do 3 razblažene uzorke vode, ubrizgajte ih u sterilizirani tanjur, a zatim ga pomiješajte uzorak vode za svaki uzorak vode, a osim toga, prazna kontrola sa samo hranjivim sastojcem na izlivu u svakom testu treba napraviti.
Nakon kulture, računanje pločasto kolonije treba obaviti odmah. Ako se broj mora odgoditi, tanjir se može pohraniti u okruženju 5-10oc, ali ne više od 24 sata, a ova se praksa ne smije koristiti kao rutinski način rada.
Kada broješ kolonije tanjura, možete promatrati golim okom. Da biste spriječili propuste, upotrijebite povećalo za provjeru ako je potrebno. Za one kolonije koje izgledaju slično i bliski su jedni drugima, ali ne diraju, sve dok je udaljenost manja od promjera najmanju koloniju, treba ih preuzeti odvojeno. Te kolonije koje su u bliskom kontaktu, ali imaju različite nastupe (morfologiju ili boju) također bi trebala biti prebrojana odvojeno.
Pri izračunavanju prosječne kolonije istog razrjeđivanja, ako jedna od tanjira ima velike pahuljice koje raste, ne treba ga koristiti, a tanjir bez paljenja treba koristiti kao kolonija. Ako su pahuljice manje od polovine ploče, a distribucija preostalih kolonija je vrlo ujednačena, broj kolonije od 1/2 tanjira s ujednačenim rastom može se pomnožiti sa 2 da bi predstavljali broj cijele kolonije.
Rezultat ukupnog broja bakterijskog broja je ukupan broj kolonija u svakoj ploči ili prosječnom broju kolonija u paralelnim eksperimentalnim pločicama istog razrjeđivanja pomnoženo s razrjeđivanjem višestrukim. Kada je konačni rezultat unutar 100, rezultat se bilježi u skladu sa stvarnim brojem kolonija; Kada je veća od 100, koriste se dvije značajne figure i izražene kao eksponent od 10. Ako se broj kolonija ne može računati, višestruki razrjeđivanje treba napomenuti prilikom izvještavanja o rezultatima.
74. Kako izračunati ukupan broj bakterija u uzorku vode na temelju rezultata broja kolonije?
Pri izračunavanju rezultata ispitivanja od ukupnog broja bakterija potrebno je usporediti i izračunati na osnovu prosječnog broja kolonija na različitim razrjeđivanjima. Metoda je sljedeća:
⑴ Prvo odaberite slučaj u kojem je prosječni broj kolonija između 30 i 300 za izračun. Kada se prosječni broj kolonija na samo jednom razrjeđivanju ispunjava ovaj raspon, prosječan broj kolonija pomnoženo na njeno razrjeđivanje višestruko se koristi kao rezultat ukupnog broja bakterija u uzorku vode.
⑵ Ako je prosječni broj kolonija na dva razrjeda između 30 i 300, metoda izračuna treba odrediti u skladu s omjerom dvije. Ako je omjer manji od 2, prosjek prosječnog broja kolonije pomnoženo s višestrukim razrjeđivanjem koristi se kao rezultat ukupne bakterijske tablice uzorka vode; Ako je omjer veći od 2, manji od prosječne brojeve kolonije pomnoženo s njegovim razrjeđivanjem višestruko će se koristiti kao rezultat ukupne bakterijske tačke uzorka vode.
Ako je prosječna tačka kolonije svih razrjeda veća od 300, prosječna kolonija od najvećih razrjeđivanja višestruko višestruko pomnožena s razrjeđivanjem višestruko mora se koristiti kao rezultat ukupne bakterijskog broja uzorka vode.
Ako je prosječna broja kolonija svih razrjeđivanja manja od 30, prosječna broja kolonije najmanju razrjeđivanje višestruko pomnožena s razrjeđivanjem višestruko mora se koristiti kao rezultat ukupne bakterijskog broja uzorka vode.
Ako prosječna tačka kolonije svih razrjeđivanja nije između 30 i 300, prosječna kolonija broji najbliža 30 ili 300 pomnožena s razrjeđivanjem višestruko korištena je kao rezultat ukupne bakterijskog broja uzorka vode.
75. Kakvo je značenje koliformnog broja (vrijednost)?
Coliform bakterije se odnose na klasu aerobne ili fakultativne anaerobne, laktozne fermentiranje, gram-negativne, partike bez spore, tako da se ponekad nazivaju i fekalnim koliformama ili escherichia coliforms ili escherichia coliform. Coliform bakterije mogu proizvesti kiselinu i plin nakon što se uzgajaju u laktoznoj mediju u 37oc tokom 24 sata. Broj (vrijednost) koliformnih bakterija općenito se mjeri u broju koliformnih bakterija sadržanih u 1L ili 100ml vode.
Ako izvor vode kontaminira izmet, može se kontaminirati crijevnim patogenima i uzrokovati crijevne zarazne bolesti. Budući da CreinSinal Patogen prikazuje relativno mali udio broja mikroorganizama, često je vrlo teško odvojiti patogene iz vode, posebno vode iz slavine. Coliformna bakterije su najčešća i najveća vrsta bakterija među crijevnim aerobnim bakterijama, tako da se često koriste kao indikatorske bakterije za fekalnu kontaminaciju. Odnosno, broj koliformnih bakterija u vodi koristi se za suđenje je li izvor vode kontaminiran izmetom, a mogućnost zaključivanja da se izvor vode kontaminiraju crevni patogeni.
76. Koje su metode za određivanje broja koliformnih bakterija?
Postoje dvije najčešće korištene metode za određivanje ukupne koliformne bakterije: metoda fermentacije s više cijevi i membranski filter.
Metoda fermentacije s više cijevi zasniva se na karakteristikama koliformnih bakterija, poput fermentacije laktoze, gram-negativne bojenje, nema spora i u obliku štapa. Ispituje se kroz tri koraka za određivanje ukupnog broja koliformnih bakterija u uzorku vode. Metoda fermentacije s više cijevi koristi najvjerovatniji broj za izražavanje eksperimentalnih rezultata, poznatim i kao MPN. Zapravo je metoda za procjenu gustoće i sanitarne kvalitete E. COLI-a u vodnim tijelima na temelju statističke teorije. Ova procjena ima tendenciju da bude veća od stvarnog broja. Procijenjena vrijednost koliformnog broja određena je razrjeđivanjem koja pokazuje i pozitivne i negativne rezultate. Prilikom dizajniranja broja ponavljanja potrebnih za testiranje uzoraka vode treba se temeljiti na tačnosti potrebnih podataka.
Metoda membranske filtra koristi posebnu sterilizirana mikrovalna membrana za filtriranje uzorka vode. Nakon što su bakterije zarobljene na membrani, membrana je pričvršćena na Fuchsin natrijum-sulfit kulturni medij za kulturu. Budući da se koliformne bakterije mogu ferktore, ljubičasto-crvene kolonije s metalnim lusterom pojavit će se nakon kultivacije na membrani filtriranja. Brojanjem broja kolonija s ovom karakteristikom na filter membrani može se izračunati broj koliformnih bakterija sadržanih u svakoj litri uzorka vode. Membrana filtriranje može mjeriti veću zapreminu uzoraka vode i može dobiti rezultate brže od metode fermentacije s više cijevi, ali efekat je loš kada je zamućenost velika i gustoća ne-e. Coli bakterije je visoka.
77. Šta je zaostali hlor?
Preostali hlor je hlor koji ostaje u vodi nakon što se voda dezinficira s hlorom određenim vremenom. Njegova je funkcija održavanje kontinuirane baktericidne sposobnosti. Od trenutka kada voda ulazi u mrežu cijevi na vodenu točku, mora se održavati učinak dezinfekcijskog u vodu kako bi se spriječilo moguće oštećenje patogena i ponovnog rasta. To zahtijeva da iznos dezinficijensa dodan u vodu ne bi trebalo da zadovolji samo potrebe ubijanja patogena u vodi, već zadrže i određenu količinu preostalog iznosa za sprečavanje ponovnog rasta patogena tokom procesa vodnog transporta. Ako se koristi dezinfekcija hlora, tada je dio dezinfekcijskog dijela koji prelazi potrebe za dezinfekcijom je preostali hlor.
Preostali hlor ima dva oblika: besplatni preostali hlor (CL2, hocl i ocl-) i kombinovani zaostali hlor (NH2CL, NHCL2 i NCL3). Ova dva oblika mogu postojati u istom uzorku vode u isto vrijeme, a zbroj dvojice naziva se ukupni preostali hlor. Besplatan zaostali hlor ima snažne baktericidne sposobnosti, ali lako je raspadati. Kombinovani preostali hlor ima slabu baktericidnu sposobnost, ali traje duže u vodi. Generalno, kada u vodi nema amonijaka ili amonijaka, preostali hlor je besplatan preostali hlor, dok u vodi postoji amonijak ili amonijum u vodi, koji obično sadrži kombinirani preostali hlor i kombinirani preostali klor. Količina preostalog hlora mora biti prikladna. Preniska neće igrati ulogu u sprečavanju i liječenju patogena. Previsok neće povećavati samo troškove dezinfekcije, već takođe može nanijeti štetu ljudskom tijelu kada je u kontaktu s ljudskim tijelom.
Konceptualno, zaostali hlor odnosi se na dezinfekciona sredstva serije hlora i hlora. Kada koristite ostale dezinficijente ne-hlora, kao što su dioksid hlora, preostali hlor treba shvatiti kao preostala dezinfekcionarna dezinficijensa u vodi nakon određenog dijela kontakta.
78. Koje su metode za određivanje preostalih hlora? Koji su njihovi primenljivi opseg?
Određivanje preostalog hlora može se izvesti iinetinjom i vizuelnom titracijom O-tolidina, n, n-dietil-P-fenilendiamine (DPD) (DPD) (DPD) željeznom titracijom, n, n-dietil-phenylendiamine spektrofotometrija (GB 11898-89), itd. Metoda za titraciju IOD može odrediti samo ukupni ostatak hlor u uzorku vode; metoda O-Tolidin Visual Colorimetry može odrediti ukupni preostali hlor i besplatni preostali hlor respektivno promjenom operativnog postupka; N, N-dietil-P-fenilendiamine metoda titracije ili spektrofotometrija može odrediti slobodni hlor ili ukupni hlor u koncentracionom rasponu od 0,03-5 mg / l, a promjenom operativnog postupka, monocholoramina, dihloramina i nekih kombinovanih komponenti hlora također se mogu odrediti.
Metoda titracije joda pogodna je za uzorke vode s ukupnim sadržajem zaostalih hlora veći od 1 mg / l, a obično se koristi metoda za određivanje količine dodane količine klora. O-Tolidin Visual Colorimetric metoda je jednostavna za rad i uobičajena je metoda za određivanje preostalog hlora u pitkoj vodi. Raspon mjerenja je 0,01-10 mg / l. N, n-dietil-P-fenilendiamine metoda titracije ili metoda spektrofotometrije ima visoku osjetljivost i može odrediti uzorke vode sa niskim sadržajem zaostalog hlora. Pogodan je za određivanje ukupnog dostupnog hlora u kanalizaciji koja sadrži organsku materiju. Mjerni rasponi dvije metode su 0,05-1,5 mg / l i 0,03-5 mg / l, respektivno.